對蝦桃拉病毒（TSV）熒光PCR核酸檢測試劑盒說明書

【產(chǎn)品名稱】

商品名稱：對蝦桃拉病毒（TSV）核酸檢測試劑盒(RT-PCR 熒光探針法)

Name ：Diagnostic Kit for Taura Syndrome Virus RNA (RT-PCR Fluorescence Probing)

【包裝規(guī)格】48 份/盒

【預期用途】

本試劑盒適用于檢測的對蝦樣品按不同的大小或感染期取不同組織樣品等標本

中對蝦桃拉病毒 RNA，適用于對蝦桃拉病毒感染的輔助診斷。其檢測結果僅供參考。

【檢驗原理】

本試劑盒用一對對蝦桃拉病毒特異性引物，結合一條特異性熒光探針，用一步

法熒光 RT-PCR 技術對對蝦桃拉病毒 RNA 進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑

感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

名 稱 規(guī) 格

酶液 50μl×1 管

TSV 反應液 1.0ml×1 管

TSV 陽性質控品 50μl ×1 管

陰性質控品 250μl ×1 管

說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融少于 5 次，

有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 7300、7500、ABI stepone / stepone plus 、安捷倫 MX3000P/3005P、MJ

Opticon2 等其他熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

對蝦樣品按不同的大小或感染期取不同組織樣品 0.1g 左右，其中，對蝦幼體、

仔蝦取完整個體，3cm 以下的幼蝦取摘除蝦眼的頭胸部，較大的幼蝦可取腮區(qū)或數(shù)根

腮絲，成蝦取 1~2 根腮絲或自心臟或腹部血竇抽取血淋巴，懷疑為慢性感染的較大幼

蝦或成蝦取淋巴器官。如果 2h 以后才能處理，宜將樣本保存于無水乙醇中。非對蝦

的甲殼類動物參照對蝦的方法取樣。非生物樣品，取 0.1~0.5g。

【保存和運輸】

上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標

本運送應采用 2~8℃冰袋運輸，嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1. 樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1樣本前處理

手術剪剪碎混勻后取 0.05g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，

待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100uL 于 1.5mL

滅菌離心管中。

1.2RNA 提取

推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產(chǎn)的 RNA 提取試劑盒（離心柱提取

法），請按照試劑盒說明書進行操作。

2. 試劑配制（試劑準備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性

對照+1 管陽性對照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

試劑 TSV 反應液 酶液

用量 20μl 1μl

3. 加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的 RNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μl，分別加入相應的反

應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4. PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內(nèi)；

4.2設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25ul；熒光通道選擇：

檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）NONE，請勿

選擇 ROX 參比熒光。

4.3推薦循環(huán)參數(shù)設置：

步驟 循環(huán)數(shù) 溫度 時間 收集熒光信號

1 1cycle 42℃ 20min 否

2 1 cycle 95℃ 10min 否

3 40 cycle

94℃ 15sec 否

55℃ 30sec 是

5. 結果分析判定

5.1結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲

線出現(xiàn)整體傾斜時，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15

范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))，以及 Threshold 的 Value

值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。

5.2結果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤35.0，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線；

可疑：檢測通道 35.0<Ct 值≤37，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35.0<Ct

值≤37，且曲線有明顯的增長曲線，判定為陽性，否則為陰性；

陰性：樣本檢測結果 Ct 值>37 或無 Ct 值。

6. 檢測方法的局限性

Ø 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

Ø 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結果；

Ø 陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏，會導致假陽性結果；

Ø 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

Ø 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

Ø 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或

定量檢測不準確的結果；

Ø 本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

7. 質控標準

陰性質控品：無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32；

以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

8. 產(chǎn)品性能指標

陰陽性參考品符合率：5 份陽性參考品符合率為 100％；10 份陰性參考品符合率

為 100％。

低檢測限：5.0×102copies/ml。

精密度：批內(nèi)、批間精密度檢測 Ct 值的變異系數(shù)（CV）均小于等于 3%。

【注意事項】

Ø 所有操作嚴格按照說明書進行；

Ø 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化，*混勻并短暫離心；

Ø 反應液應避光保存；

Ø 反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

Ø 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)工作服；

Ø 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行，以免交叉污染；

Ø 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

Ø 試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全

通則》進行處理。

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